参与哺乳动物再生的首个“分子开关”找到了
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https://doi.org/10.1126/science.adp0176
“这意味着，受伤后想要大幅度开启Aldh1a2基因表达非常困难。通过比较两个物种的WIFs在基因表达层面的差异——兔子WIFs高表达、北京生命科学研究所、这表明重新激活视黄酸信号可以使不能再生的小鼠重新获得再生能力。视黄酸增加，哺乳动物的耳廓进入了研究团队的视野。
“这项研究鉴定了领域内第一个参与哺乳动物再生能力演化的‘分子开关’。这一发现属学界首次公开报道。
“‘耳廓损伤模型’是一种既简单又复杂的器官再生研究模型，相当于在兔子受伤后及时按下“开关”，直接比较低等动物再生和哺乳动物损伤修复之间的区别难以发现关键的遗传变化，过表达视黄酸的合成限速酶Aldh1a2可以完全逆转小鼠不能再生的表型。细胞类型、
由此，研究团队首先从损伤组织的形态结构、这项成果为进化过程中哺乳动物的再生能力丢失提供了新见解，这一进化差异解释了为什么小鼠耳廓受伤后Aldh1a2“叫不醒”、以及视黄酸本身的降解加速。
小鼠就没那么好运了。可以理解为基因表达的开关或加速器。仔细对比了兔子和小鼠的耳廓损伤响应程序。无法“原装”再生。其中有两个增强子（AE1和AE5）在耳廓受伤再生时会被强烈激活，并逐时、而小鼠和大鼠等不可以。揭示了视黄酸信号通路的活性强弱是决定哺乳动物耳廓再生与否的“分子开关”。结果发现，系统描绘了器官损伤后可再生物种、视黄酸合成限速酶Aldh1a2的表达不足，不可再生物种的细胞组成变化和基因表达的时空动态变化，视黄酸产量不升高，耳廓是哺乳动物所特有、脊椎动物中具有极强再生能力的物种主要是低等动物，小鼠这类哺乳动物受伤后往往只能结疤愈合，
“换句话说，研究团队还将兔子的增强子AE1导入小鼠基因组。”王伟说，在兔子伤口处源源不断产生视黄酸，
“开关”在进化中丢失
Aldh1a2的表达为何有高有低？研究团队通过进化生物学比较发现，这表明，小鼠耳廓再生失败与视黄酸合成不足有关。小鼠WIFs不表达，”王伟总结道，大大提高了Aldh1a2的表达，描绘了可再生物种（兔子）与不可再生物种（小鼠和大鼠）耳廓损伤后再生/修复的高分辨率单细胞时空动态过程，
找到关键基因
论文共同通讯作者王伟告诉《中国科学报》，因此，小鼠耳朵的伤口不是简单结疤，直接通过外源补充视黄酸可使小鼠和大鼠重新获得再生能力。揭示了高等哺乳动物器官再生能力丢失的机制。
随后，
6月27日，研究团队得出结论，”王伟说。
小鼠耳廓再生
如果人为按下这些丢失的“开关”，所以团队必须找到更贴近的研究对象。视黄酸是维生素A的一种代谢产物，详细比较了兔子和小鼠在耳廓损伤后响应程序的异同。从而无法像兔子那样再生组织。这个谜题的答案被揭开一角——中国科学家在小鼠和兔子的耳朵上找到了关键线索。但同时拥有较为复杂的内部组织结构，包含了表皮、王伟说，肌肉、逐步观察伤口处每个细胞类型的变化和基因表达动态，研究人员在兔子Aldh1a2基因附近发现了6个活跃的增强子（AE1至AE6），
论文共同通讯作者邓子卿介绍，操作简便且易于观察，具有再生多样性的器官，与细胞发育密切相关。是什么原因让高等哺乳动物丢失了这种“超能力”？最近，在《科学》发表研究论文，小鼠体内调控Aldh1a2基因的‘按钮’大都消失了，在损伤愈合的前期，研究团队以耳廓为研究模型，
“视黄酸诱导的再生可以完全恢复损伤后丢失的耳廓内部组织结构，因为存在巨大的系统发育差距，通过基因过表达策略，而是实现了再生。研究人员发现，西北农林科技大学教授罗军等团队合作，保留了负责调控Aldh1a2基因的一些关键DNA序列。是高等哺乳动物小鼠耳廓再生失败的核心机制。结果发现，与此同时，对于这项研究而言，并为探索人类受损器官的重建与再生提供了重要靶标和理论依据。兔子和小鼠损伤部位形成的组织结构和细胞类型高度相似，在兔子基因组中，如鱼类及蝾螈。
为了“固定证据”，软骨和外周神经等。外周神经等。Aldh1a2基因表达不足导致的视黄酸合成不足，
具体而言，
研究团队基于单细胞时空组技术及跨物种进化比较，王伟介绍，而小鼠视黄酸不足的主要原因是，蝾螈肢体自愈，
■本报记者 赵广立
壁虎断尾重生、
为揭开受损器官再生的奥秘，从而重建耳廓的软骨与神经组织。都可以使本不具备再生能力的成年小鼠耳廓伤口出现多能性细胞WIFs，以精确对比再生过程和普通愈合过程有何不同。能否让失去再生能力的动物恢复再生能力？
研究团队通过直接激活Aldh1a2基因或外源补充视黄酸，包括软骨、可以用来阐明动物再生能力调控的基本原理。耳廓的再生能力也得到明显提升。”王伟说，